Q：为什么我收到的瓶子看上去像是空的？

A：我们很多产品都是小包装销售，有些是透明的或者是成薄膜样贴在瓶子上，不是非常容易观察到。所以很多瓶子看上去像是空的，这个很正常。这些产品由于量太少，不能从瓶中完全取出。所以添加适当的溶剂（根据datasheet上提到的），震荡瓶子或者用枪头将溶剂涂到瓶壁上保证化合物溶解。这样获得的液体可用于实验。

Q：如何处理吸潮的化合物？

A：吸潮的化合物很容易从空气中吸收水分。应当干燥保存，尽可能避免与空气接触。这些化合物在他们干燥状态一般是晶体，如果接触空气，会看上去很潮湿，甚至看上去像水滴。

Q：根据datasheet，我购买的化合物是油状的，我如何转移或者用枪头吸取我需要的量？

A：我们提供的液体产品大多不是很整洁（比如，他们不溶于溶剂），看上去像瓶里面的油。液体物质需要溶解后从瓶中回收。加入适当的溶剂（你购买的化合物的溶解信息参考datasheet）到瓶中，回收液体（或者分装）。

Q：如何处理蜡状物质或者低熔点固体？

A：低熔点物质通常看上去像蜡或者粘稠物质。如果是固体的话，很难从瓶中移出来，如果你尝试称这些物质，回收率会非常低。建议用溶剂溶解然后移出来。

Q：根据datasheet，在稀释母液前建议加入BSA或者血清，为什么？

A：BSA和其他血清白蛋白经常是疏水性小分子（比如激素和脂肪酸）的天然载体蛋白。他们是高度水溶性的，但是含有明显的疏水结合结构域（会结合非特异疏水分子）。疏水小分子和BSA的结合有助于形成疏水小分子溶液。一般，BSA和疏水小分子是1：1比例结合，所以BSA的摩尔浓度是相同或者高于你想得到的小分子化合物的浓度。如果使用有机化学溶剂，最好实验的时候设置有机化学溶剂的空白对照。

Q：我怎样溶解购买的化合物？

A：特定产品的datasheet包括了化合物溶解的信息。很多不能直接用水溶解的化合物能够溶解在乙醇中，或者DMSO或者DMF，制备母液。母液保存时保持稳定，用水或者液体培养基稀释到需要的浓度。不管化合物是否是水溶性的，我们强烈建议使用无水溶剂。像DMSO的溶剂是吸潮的，如果溶剂从空气中吸收水分，可能会引起问题。甚至一点点水都能够影响疏 水化合物的溶解。大多数情况，乙醇或者DMSO的溶解性足够可以用水或者液体buffer进行1:500到1:1000稀释，获得需要的最终浓度。少量残留的有机溶剂(比如0.1% DMSO)正常不会影响生物系统，但是我们强烈建议在实验中设置溶剂的对照。对于常规技术不能解决的化合物，datasheet提供了另外的操作手册。

Q：我的化合物在DMSO中溶解很好。但是当我用液体培养基稀释DMSO母液时出现沉淀，应该如何处理？

A：如果母液是用DMSO配置，用液体培养基稀释的话会出现沉淀。震荡，超声或者37℃水浴超声几分钟沉淀会溶解。这种沉淀不会影响化合物，所以使用溶液前必须花几分钟保证沉淀完全溶解。

Q：常识

A：小分子化合物的溶解性，特别是那些疏水的，有时候是实验设计的限制因素。理想的方法是用水或者简单的液体缓冲液进行处理，但有时候不太可能。

Q：根据datasheet上的浓度溶解化合物，但是我仍然看到固体物质。我该怎么办？

A：大多数情况，晶体物质的溶解速度取决于三种主要因素：溶剂和化合物的亲和力，样品中晶体的尺寸，房间的温度。加热溶解经常是最简单的方法去加速溶解。很多化合物可以耐受短期的37℃水浴，不会损坏化合物。水浴，或者与震荡、超声配合，可以溶解化合物。如果以上方法不能溶解，请联系当地经销商。

Q：如何溶解多肽？

A：用过滤灭菌水溶解多肽。可以滴几滴氢氧化铵到酸性多肽或者10%乙酸到碱性多肽将有助于溶解。如果有必要可进行短暂的超声。疏水性很强或者中性的多肽， 先使用少量的DMSO或者二甲基甲酰胺（DMF），再加入水或者buffer。为了避免溶解问题，在加入buffer或者盐溶液前必须完全溶解多肽。含有Trp，Met或者游离的Met的多肽要使用不含氧气的溶液和还原剂，避免发生氧化。

Q：我的母液开始是澄清的，但是当第二次使用时，从冰箱取出了，形成了沉淀。这个该怎么处理？

A：溶液的冻融会产生结晶的化合物或者沉淀。如果浓度接近于溶解度的话，会经常发生。这种沉淀是暂时的，当溶液的温度恢复到室温时自己会溶解。如果沉淀溶解很缓慢，在37℃水浴和超声可以解决这个问题。

Q：在细胞培养或者其他实验中如何溶解脂类？

A：大多数脂类都是疏水性化合物。如果用液体培养基，比如细胞或者组织培养基溶解是比较困难的。大多数脂类需要和载体蛋白，比如BSA混合。另外一个办法是将脂类以悬浮的形式递送，而不是真正的溶液（在使用前震荡或者离心悬浮液，保证悬浮液是均一的），或者以胶束形式传递脂类。

Q：datasheet没有提到我购买的化合物是否灭菌？是否会污染我的细胞？

A：请注意我们所有的产品都没有灭菌，除非datasheet上标明的。如果没有灭菌，我们不能保证是否会污染您的细胞。但是下面有一些基本的方法可以很容易避免细菌或者支原体的污染。首先确定培养基含有抗生素。这个会避免很多的污染问题。其次用100%乙醇或者100%DMSO溶解这些化合物。这些溶剂不利于细菌或者支原体的生长，防止母液中污染物的繁殖。最后，如果需要的话，大多数小分子的溶液可以通过0.22um滤膜过滤除菌。请注意，过滤的话化合物会损失。过滤灭菌可以很好的防止污染。

Q：我是否可以使用小分子化合物作为分析标准品或者校对品？

A：我们所有的小分子化合物只是用于研究。不能提供分析标准品或者校对品。纯度，分析的技术和化合物的包装都没有达到标准品的要求。

Q：我是否可用这些化合物用于人体试验？

A：我们只是销售实验用试剂，不能用于人体试验，不是在GMP标准生产（药品要求按照GMP标准生产）。没有经过热源含量测定，没有灭菌。

Q：datasheet里面提到化合物要保存在惰性气体里面，那是什么意思？

A：惰性气体比如氮气或者氩气可以保护化合物防止氧化。将气体保存在惰性气体里面，首先要选择有紧密盖子或者帽子的瓶，优先选择有氯丁橡胶塞或者氯丁橡胶垫片（可确保密封性良好）。将你的化合物分装，将灵活的橡胶管引导氮气或者氩气进入瓶内几秒钟，将瓶子盖紧，用parafilm密封好。（注意：每次打开瓶子，要重新充一次氮气或者氩气，然后密封保存。）我们只是介绍了用惰性气体保存化合物的方法。这些产品如果没有保存在惰性气体中，保质期会非常短。

Q：制备母液后，溶液是否可以冻融或者可以分装？

A：反复冻融不会损害大部分化合物。所以其实没有进行分装母液。不过分装的话，使用更方便。除非datasheet提到要避免反复冻融，一般的话，你可以按照自己的需要冻融小分子化合物。

Q：我的试剂已经打开用过一次了，剩下的如何保存？

A：首次使用后推荐的保存方法在datasheet上有说明。这个取决于化合物的稳定性和化学活性。大多数化合物，用DMSO或则乙醇溶解后冷冻保存3个月。

Q：如何保存多肽？

A：一般的话，保存在-20℃。如果打算称重多肽，先恢复到室温再打开。吸水会影响稳定性，影响样品的称重。反复冻融也会影响多肽的稳定性。重悬的多肽应该分装，在-20℃或者-70℃保存。所以避免反复冻融。液体的话，多肽在pH5~7可以达到最大的稳定性。多肽的液体稳定性不是很好，特别是含有Cys，Met，Trp，As和Gln。为了获得更大的稳定性，可以使重悬的多肽重新变成粉末。

Q：datasheet说化合物的溶液必须新鲜制备，不能保存。我不需要整瓶，我需要的重量称不出来。应该如何处理？

A：很多情况，这种化合物能够溶解在挥发性溶剂中，分装后一天内使用，接着溶剂就蒸发掉了。这种方法可以少量保存固体（量少于可以称重的），当你想要用时，根据datasheet上讲的溶解化合物。如果你想知道这个技术是否适合你用，或者想选择适合的挥发溶剂，请联系当地经销商。

Q：我货物收到的时候是室温，但是datasheet上说要保存在-20℃。这个产品会有问题吗？

A：我们标签上显示的保存温度是长期保存的优化条件。很多化合物短期内在稍高的温度内也是很稳定的，包装只是个过度。如果您担心您的物品是否正确运输，请在我们网站查找部分产品的运输条件。

Q：我购买的化合物对光敏感吗？

A：大多数化合物对光不会很敏感。对光敏感的化合物，都标注在data sheet上。如果是光敏感的话化合物，最好在暗室处理或者用锡箔纸包裹瓶子，或者保存时放在密闭盒子中。